리코펜 분말의 생산방법에 관한 연구

리코펜은 중요한 카로티노이드입니다그것은 테트라페노이드의 테르펜과에 속한다다.자연에서 주로 토마토, 토마토 제품, 수박과 자몽과 같은 과일에서 발견된다.이것은 잘 익은 토마토의 주요 색소입니다.리코펜은 항산화, 항암, 혈중 지질을 낮추는 등의 생리 기능을 가진 강력한 항산화 물질이다.건강식품, 의약품, 화장품 및 기타 분야 [1-2]에 널리 사용된다.현재 리코펜은 여러 나라에서 영양 보충 및 착색제로 널리 사용되고 있다 [3].리코펜 원료의 글로벌 누적 판매량은 매년 증가하고 있으며, 시장 전망도 넓다.

리코펜 (Lycopene) 분말 생산주로 식물 추출과 화학 합성이라는 두 가지 방법에 의존한다.식물추출방식은 계절에 따라 제한되며 식물의 생장주기가 길고 제품함량이 낮아 제품의 집중적이고 대규모적인 생산을 보장할수 없다.화학적 합성방법은 화학시약 잔류물, 여러 가지 이성질체 형태, 환경오염 등의 문제가 있다.생명공학 합성 방법은 저비용, 짧은 주기, 안정적인 공급, 환경 친화적이고 지속 가능한 개발의 장점을 가지고 있습니다.최근 몇 년 동안, 점점 더 많은 연구자들의 관심을 끌고 있다.

현재,에 대한 연구라이코펜 분말의 생명공학 합성 (biotechnological synthesis of리코 펜powder미생물 숙주세포의 선택의 다양화, 경로 변환을 위한 대사공학 연구 및 혁신, 생명공학에서 합성한 리코펜의 수율을 대폭 향상시킨 발효 공정 및 증폭 기술 탐구 등 상당한 진전을 이뤘다.그러나 아직까지 대부분의 연구는 단일 기술 분야의 획기적인 발견에 집중되어 있으며, 라이코펜의 생명공학적 합성에 대한 체계적인 연구와 요약은 상대적으로 미흡한 실정이다.

따라서 본 논문은 물리적 및라이코펜의 화학적 성질 및 현재의 생산 기술, 합성생물학을 대표하는 생명공학을 이용한 라이코펜의 생합성에 관한 연구를 다양한 균주의 발효방법 비교와 정확한 라이코펜의 정량방법을 중심으로 체계적으로 요약하고, 생명공학을 이용한 라이코펜 생산의 문제점과 향후 연구방향을 제안하고,생명공학을 이용한 리코펜의 산업적 생산과 생명공학을 이용한 기타 고부가가치 천연물의 생합성에 참고자료를 제공하는 것을 목적으로 한다.

1. 리코펜 분말의 물리적, 화학적 특성 및 응용

리코펜은 4 족 화합물로서,불포화 알케닐 화합물, 그리고 산소 원자를 포함하지 않는 카로티노이드.리코펜은 분자식이 C40H56 이고 상대 분자량은 536.85이다.분자구조에서 11개의 공액이중결합과 2개의 비공액이중결합을 가지며, cis-트랜스 이성질체 에도 종종 존재한다.자연계에서 천연 리코펜은 주로 올 트랜스 (all-trans) 이며, 시스는 매우 적은 양을 가지고 있다.

리코펜 분말은 물에 녹지 않는 지용성 색소로,그러나 지질 및 비극성 유기용매에 용해된다.그것의 분자 구조는 초가시광선 흡수 스펙트럼에서 독특한 흡수 영역에 해당하는 chromophore를 포함하고 있다.색 깊이는 리코펜의 농도에 따라 주황색에서 검붉은 색까지 다양하며, 용매에 따라 약간 변할 수도 있다.예를 들어, 해바라기 기름에 녹은 리코펜 결정은 눈에 보이는 검붉은 색으로 보이고, 석유 에테르에 녹은 것은 노란색으로 보입니다.리코펜은 분자 내에 이중결합이 비교적 많기 때문에 반응성이 매우 뛰어나 빛, 산소, 고온 조건에서 산화 및 구조 이성화 반응이 일어나기 쉬워 [4] 생리 활성이 저하될 수 있다.따라서 리코펜을 추출할 때 비타민 C, 비타민 E, 2,6-di-tert-butyl-4-methylphenol (BHT), tert-butylhydroquinone (TBHQ) 등의 항산화 물질이 첨가되는 경우가 많다 [5].

과는 달리리코 펜 β-carotene,비타민 A의 활성 특성을 가지고 있지 않기 때문에 초기에는 그 응용성이 평가되지 않았습니다.하지만 최근 리코펜의 생리적인 기능이 점차 더 잘 알려지면서 그 응용이 더욱 확산되고 있다.리코펜은 인체 내 산소 활성산소를 제거하고 싱글렛 산소를 제거할 수 있는 강력한 항산화 물질이다.항산화 능력은 비타민 E의 약 100배, 베타카로틴의 2배 정도이다 [6~9].또한 항종양, 전립선 질환 예방, 심혈관 질환 위험을 낮추는 효과가 있는 것으로 나타났다 [10-11].화장품, 보건품, 식품 등에 널리 쓰인다.리코펜은 현재 유럽연합의"참신한 식품"승인과 미국에서"일반적으로 안전한 것으로 인정"(GRAS) 지위를 획득했습니다.피플 &의 개선으로#39;의 생활수준과 건강에 대한 강조가 갈수록 높아짐에 따라 미국은 라이코펜 판매량이 매년 35%의 속도로 성장할 것으로 예측한다.따라서 리코펜의 효율적인 생합성 기술은 시장 응용 가치가 크다.

리코펜 파우더의 생산 방법 2

2.1리코펜 분말 생산 방법 비교

현재, 거기에는리코펜을 생산하는 세 가지 방법:식물 추출, 화학적 합성, 그리고 생합성.식물 추출법은 주로 토마토 등 잘 익은 식물 열매에서 리코펜을 추출해 정제하는 방법이다.그러나이 방법은 지역, 계절, 토마토 품종, 성숙도 등의 다양한 요인에 영향을 받기 때문에 불안정하다.중국에서 리코펜은 신장 (일조량이 긴)에서 자란 토마토에서 주로 추출된다.그러나 토마토의 리코펜 함량은 매우 낮아 일반적으로 20 mg/kg에 불과하며, 함량이 더 높은 토마토 껍질에서도 0.4 g/kg 미만이다 [12].

추출 비용이 높고, 추출물에 다른 카로티노이드가 들어 있는 경우가 많아 제품의 순도에 영향을 미친다.그리고 그 함량이 적기 때문에 추출과정에서 유기용매를 다량 소모하여 환경오염에 더 큰 영향을 미친다.화학적 합성방법은 주로 옥타트리에네다이얼과 트리페닐포스핀 클로라이드 또는 트리페닐포스핀 황화물의 Wittig 반응을 통해 리코펜을 합성한다 [13].화학 합성 방법은 높은 수율 (65% 이상), 저렴하고 재활용 가능한 원료, 온화한 반응 조건의 특성을 가지고 있습니다.화학합성법은 수율이 높고 원가가 저렴하지만, 리코펜 구조에 이중결합이 많아 이성질화하기 쉽고, 제품에 용매잔류물이 포함될 수 있어 안전성에 대한 위험이 있다.생합성법은 미생물이 발효하고 또 발효하는 과정을 가리킨다풍부한 것을 사용하여 리코펜을 생산합니다그리고 설탕, 물엿, 무기염류 등 쉽게 구할 수 있는 원료.미생물발효법은 식물추출법의 안전성 (둘다 생물물질대사에서 자연적으로 추출한 것으로 인공적으로 합성하지 않음)이 있을 뿐만 아니라 화학합성법의 원가가 저렴하고 대량생산이 가능한 장점이 있다.향후 라이코펜 생산을 위한 이상적인 방법으로 평가되고 있다.

2.2리코펜 분말의 생합성 경로

리코펜은 다른 테르페노이드와 유사한 4 테라페노이드 화합물이다다.이것의 생합성을 위한 일반적인 전구체는 두 개의 이소펜테닐 단위 IPP (이소펜테닐 피로인산염)와 DMAPP (디메틸알릴피로인산염) 이며, 이들은 서로 이성질체이다 [14].현재 자연계에서 IPP와 DMAPP을 합성하는 방법은 두 가지가 있는데, 하나는 원핵생물과 식물에서 MEP (2-methyl-erythritol-4-phosphate) 경로이고, 다른 하나는 진핵생물에서 MV한(mevalonate) 경로이다.

원핵생물과 식물에서는 MEP (2-methyl-erythritol-4-phosphate) 경로를, 진핵생물에서는 MVA (mevalonate) 경로를 이용한다.

MEP 경로는 피루브산과 3-포스글리세레이트를 출발기질로 사용하여 IPP와 DMAPP을 합성하고 [15], MVA 경로는 아세틸 코엔자임 A를 출발기질로 사용하여 7단계의 효소반응 [16]을 통해 IPP와 DMAPP을 합성한다.MEP 경로에 비해 MVA 경로는 더 일찍 연구되었고 반응 메커니즘도 더 철저하다.리코펜의 생합성 경로는 두 가지 모듈로 나눌 수 있습니다.업스트림 모듈은 전구물질인 IPP와 DMAPP을 합성하는 과정이고, 다운스트림 모듈은 IPP와 DMAPP 으로부터 라이코펜을 합성하는 과정이다 (개요는 그림 1 참조).IPP와 DMAPP은 isopentenyl transferase의 작용으로 단계적 응축 반응을 거쳐 GGPP를 생성한 후, GGPP (geranylgeranyl pyrophosphate)는로 전환된다octahydro-lycopeneoctahydro-리코 펜synthase (phytoene synthase, CrtB)의 작용에 의해, 그리고 octahydro-리코 펜dehydrogenase (phytoene desaturase, CrtI)의 작용에 의해 리코펜으로.

리코펜을 합성하는 미생물 2.3

생산하기 위해 발효하는 현재 알려진 미생물 리코 펜리코펜 자체를 합성할 수 있는 판토에아 (pantoea), Blakeslea trispora, 대사작용효모, Yarrowia lipolytica, Escherichiacoli 등이 포함된다.그들 중, Blakeslea trispora 연구 되어 왔 더 [17] 그리고은 또한의 유일한 산업 생산 달성 할 수 있는 변종 β-carotene다.리코 펜, 중급 제품의 합성에 β-carotene, 중에 리코 펜 cyclase 억제 제를 추가 하여 축적 된 할 수 있 발효 과정이다.여러 연구에 따르면 Blakeslea trispora에 의한 리코펜의 생산은 지속적으로 개선되었으며, 가장 많이 보고된 리코펜 생산량은 3.4 g/L이다 [18].그러나 트리코테센 곰팡이는 하위배양 과정에서 변성이 일어나기 쉬워 산출량이 불안정하다.게다가 성장 주기가 길면 생산성이 떨어지고, 생산 중에 억제제를 넣어야 하기 때문에 트리코테센 곰팡이 [19]로 리코펜을 발효시키는 과정도 크게 제한된다.

리코펜의 생명공학적 합성에 관한 연구 3

3.1리코펜을 합성하기 위한 주요 미생물의 공학적 개질

대장균은 테르페노이드의 이형 합성을 위해 가장 일반적으로 사용되는 미생물 숙주 중 하나이다.명확한 유전적 배경, 빠른 세포 성장, 풍부한 유전자 조작 도구 등의 장점은 대장균을 산업 제품 개발에 이상적인 숙주 플랫폼으로 만들어줍니다.일부 학자들은 E. coli의 이형 생산을 위해 성공적으로 공학하였다이 당분간 카로 티 노이 드대사공학과 합성생물학 기술을 통해서 [20-21].그러나 대장균이 파지에 감염되기 쉽고 [22] 내독소의 존재 등의 위험성 때문에 대장균을 이용해 리코펜을 생산하는 것은 현재 특정 식품 안전상의 위험을 안고 있어 산업적 응용이 제한적이다.

Saccharomycescerevisiae는 진핵생물 모델 생물로서 게놈 서열이 밝혀져 있고, 세포 생물학의 특징이 잘 밝혀져 있으며, 이를 위한 성숙한 유전자 조작 도구와 방법이 있다.Saccharomycescerevisiae의 대규모 발효시 파지 오염의 위험이 없으며, 일반적으로 대장균보다 안전한 것으로 판단된다.따라서 리코펜의 이형 생산을 위해 Saccharomyces cerevisiae를 변환하는 대사공학을 이용하면 응용 가능성이 클 것으로 판단된다.대장균과 마찬가지로 Saccharomyces cerevisiae는 할 수 없다합성 카로 티 노이 드자체적으로 그리고 관련 합성 유전자 [23~26]를 도입해야 한다.

Yarrowia lipolytica는 대량의 지질을 생산하는 비전통적인 미생물 숙주이며 안전하다고 간주됩니다.카로티노이드를 직접 합성할 수는 없지만 전구체 아세틸 코엔자임 A를 다량 생성할 수 있으며, 외인성 핵심 효소를 도입하여 카로티노이드의 합성이 가능하다.연구자들은 Lipomyces 효모를 기술하기 위해 많은 유전 도구를 개발했는데,이 효모는 유망한 숙주로 여겨진다MVA 경로를 통한 카로티노이드 생산[28].

진핵 미세조류는 독립영양미생물로서 빛에너지와 이산화탄소를 이용하여 바이오매스를 생산할 수 있으므로 테르페노이드의 지속가능한 생산을 위한 대사잠재력이 크다.하지만 현재 고준위 조류의 대사공학 연구는 다른 숙주에 비해 많이 뒤처져 있어 [29] 어느 정도 응용에 한계가 있다.

적색 효모 Rhodosporidium toruloides는 다음과 같은 색소를 생성 할 수 있습니다β-carotene와 γ-carotene세포 내 생합성을 통해서요.연구진은 배양 조건과 돌연변이 작용을 최적화해 카로티노이드 생산 능력을 향상시켰다.그러나 현재 적색 효모에 대한 연구는 매우 제한적인데, 이는 이용 가능한 유전체 데이터의 한계와 주요 유전자의 기능 주석 부족으로 인해 [30] 생산량이 많은 카로티노이드의 대사공학에 큰 걸림돌이 되고 있는 것으로 보인다.에탄올 축적 없이 고밀도로 생장할 수 있는 Pichia pastoris 등 카로티노이드를 생성하지 않는 효모들도 카로티노이드를 합성할 수 있도록 공학적으로 개발되었으나, 수확량이 적어 연구가 필요하다 [31].

3.2 미생물을 공학적으로 라이코펜을 합성하기 위한 전략

1) Upstream module (전구체 IPP/DMAPP 공급) 향상

리코펜과 같은 카로티노이드의 높은 수율을 얻기 위해서는 일반 전구물질인 IPP와 DMAPP의 합성을 높이는 것이 효과적인 전략이다.IPP와 DMAPP 합성에는 MEP 경로와 MVA 경로의 두 자연 경로가 포함된다.(a) MEP 경로는 주로 원핵생물에서 발견된다.DXS와 IDI는 일반적으로이 경로에서 주요 속도 제한 효소로 간주되며, [32] 아이소프레노이드 합성을 향상시키기 위해 과발현 되었다.Li 등 [33]은 IspA, ispH 및 ispE 가 DXS및 IDI 과발현 균주에서 경로의 플럭스를 더욱 증가시킨다는 것을 발견하였다.ispG의 과발현은 세포 내 MEC의 유출을 효과적으로 감소시켜 하류의 isoprenoid 생성을 크게 증가시킬 수 있다 [34].이를 바탕으로리 등 [35]은 성공적으로 증가했다리코펜 생산 77%IspG와 IspH를 활성화시켜 MEP 중간체의 축적을 제거한다.(b) MVA 경로는 주로 진핵생물에서 발견된다.HMG-CoA 환원효소는 MVA 경로 (36)를 통한 이소 프레 노이드 화합물의 생합성의 첫 번째 단계이다.Saccharomyces cerevisiae에서 HMG-CoA 환원 촉매 영역 (tHMG1)을 과발현시키면 리코펜 (lycopene)의 생성을 증가시킬 수 있다 [24].또한, MEP 경로를 최적화하여 카로티노이드 생산에 어느 정도 진전이 있었지만, MEP 경로에서 자연 숙주의 조절 메커니즘은 그 적용에 한계가 있다 [37].이 경로를 우회하기 위해 주파인 등 [20]은 완전한 MVA 경로와 외인성 유전자를 대장균에 도입하였고, 회분식 공급 및 발효 최적화를 통해 1.44 g/L의 라이코펜 수율을 얻었다.

(2) 다운스트림 모듈에 대한 연구 (the리코펜 이형 합성 경로)이다.일반적인 전략은 heterologous경로유전자를 카로티노이드가 아닌 숙주에 도입하여 카로티노이드를 생성하여 테르펜 합성 전구물질인 IPP와 DMAPP을 카로티노이드로 전환하는 것이다.Verwaal 등 [38]은 lycopene desaturase를 암호화하는 cDNA 뿐만 아니라 geranylgeranyl pyrophosphate synthase와 octahydro-lycopene synthase를 암호화하는 유전자를 포함하는 플라스미드를 대장균에 발현시켰으며, 궁극적으로 lycopene의 축적을 관찰하였다.CrtI 사본의 도입과 tHMG1 carotenoid-synthesizing 효모 세포에 β을 늘렸-carotene 콘 텐 츠 가 있습니다.이형경로 유전자의 높은 수준 및 유전적으로 안정적인 발현을 위해 Tyo 등 [39]은 화학적으로 유도된 염색체 진화를 위한 플라스미드 없는고 gene-copy 발현 시스템을 구축하였으며, 이를 engineer에드E. coli에 사용하였고 궁극적으로 플라스미드 발현 시스템에 비해 리코펜 생산을 60% 증가시켰다.연구에 따르면 리코펜 합성 경로를 최적화하는 것은 이형질 고수율 리코펜에 매우 중요한 것으로 나타났다.

3) 우회경로의 하향조절

4)리코펜 합성의 전구체, FPP는 많은 효모 대사 산물 (유비퀴논, 테르펜 알코올, 스쿠알렌 등)의 일반적인 전구물질이기도 합니다.그러나 이러한 전구체 경쟁 경로 유전자 (예:스쿠알렌 합성 유전자)의 직접적인 녹취는 세포 성장에 큰 영향을 미칠 것이다.따라서, 많은 학자들은 리코펜의 합성 플럭스를 향상시키기 위해 이러한 경쟁 경로를 하향 조절하는데 전념하고 있습니다.자연에 대한 약 한 프로 모터를 대체 기획자를 downregulate 스쿠알렌 경쟁의 유전자 sqs1 titratable 생산량을 증가시 킬 수 있다고 synthase β-carotene에서 (453.9 ± 20. 2) mg/L을 (797.1 ± 한 이래) mg/L에 Yarrowia lipolytica [40]다.심원표 등 41명은 Saccharomyces cerevisiae에서 고포도당 유도/저포도당 억압 촉진제인 pHXT1 제제를 이용하여 배양액의 포도당 농도 변화에 따른 erg9 유전자와 카로티노이드 경로 유전자의 순차적 발현을 이루어내어 효모에서 리코펜 생성이 크게 증가하였다.홍 등 (42)은 Saccharomyces cerevisiae의 dpp1과 lpp1 유전자를 제거하여 farnesol의 생성을 위한 경쟁 경로를 억제하였고, lycopene 생성도 증가시킨 erg9발현을 하향조절하여 ergosterol 생성을 억제하였다.위의 연구는 경쟁 경로를 하향 조절하는 것이 리코펜 생산을 늘리는 데 효과적인 전략임을 충분히 증명했다.

4) 섀시 셀의 변환

게다가리코펜 이형 합성 경로를 최적화하고 있습니다, 숙주 섀시 셀의 변환도 이형 경로와 일치하도록 필요합니다.섀시세포의 개량은 아세틸-coa 전구체의 플flux 강화 [43], ATP와 NADPH와 같은 보조인자 공급 강화, 특정 비필수 유전자 때려잡기, 변종의 적응적 진화 등이 있다.아세틸-coa는 카로티노이드 생합성을 위한 기질이다.천옌 등은 Saccharomyces cerevisiae에서 ypl062w 유전자의 작용 메커니즘을 상세히 연구하였다.ypl062w의 결실은 아세틸 코엔자임 A의 플럭스를 향상시키고 궁극적으로 최대 1.65 g/L인 리코펜의 생성을 증가시킬 수 있습니다.Zhou 등 (26)은 대사공학 기술과 결합된 Saccharomyces cerevisiae의 적응적 진화를 이용하여 8.15 g/L lycopene의 회분식 발효 수율을 달성하였다.에너지로서의 ATP와 전력을 감소시키는 NADPH의 공급은 카로티노이드 합성에 영향을 미치는 중요한 요소이다.중앙 대사 모 듈을 수정 하여 탄소 원본에 대한 동화 (EMP과 PPP 경로), ATP와 NADPH의 공급은 향상 된이었고, 조작 된 대장균을 합성 할 수 있는 2. 1 g/L β-carotene에 배치 발효 [44].sucAB과 sdhABCD 유전자의 발현을 조절하면 TCA 회로의 탄소 플럭스를 증가시키고 ATP의 공급을 증가시킬 수 있다.또한 talB 유전자를 조절하면 NADPH의 공급을 증가시킬 수 있으며, 이는 대장균에 의한 리코펜 합성 수율을 3.52 g/L로 증가시킨다 [45].

(5) 고수율의 리코펜을 생산하기 위한 Saccharomyces cerevisiae의 체계적인 대사공학.요약은 그림 2와 3에 나와 있습니다.

시빈 등 [25]은 Saccharomyces cerevisiae를 효율적으로 제조하기 위해 체계적으로 공학하였다대사공학을 통해 리코펜을 생합성하다, 그리고 4가지 주요 이슈를 나열했다:(a) 2차 대사산물의 축적과 숙주세포 성장이 균형을 이루어야 한다;(b) 효모에서 리코펜의 이형 합성 경로를 향상시킬 필요가 있다;(c) 효모 섀시 셀은 더 많은 전구체 물질 및 감소 전력을 제공하기 위해 변형되어야;(d) 효모 발효 기술을 최적화해야합니다.그리고, (a) 라이코펜 이형 합성 경로를 합리적으로 제어할 수 있는 GAL 프로모터 그룹을 선별하여 시간 서열면에서 효모 세포 성장을 라이코펜 생성물 축적으로부터 분리하고, 프로모터 강도 또한 생성물 합성 기간 동안 구성적인 강한 프로모터와 비교할 수 있는;(b) 라이코펜 이형 합성 경로의 세 가지 주요 유전자원을 종합적으로 스크리닝 하여 Saccharomyces cerevisiae에서 효율적으로 기능하는 PaCrtE, PagCrtB 및 BtCrtI의 새로운 최적 조합을 얻었다.(c) 또한 Saccharomyces cerevisiae섀시 세포에서 리코펜 합성에 필요한 충분한 전구물질, 아세틸계 코엔자임 A 및 환원력 NADPH (reduced co효소II)를 제공하고, 리코펜 축적에 영향을 미치는 특정 내인성 비필수 유전자를 제거하여 리코펜 생산을 더욱 증가시키기 위해 일련의 개량을 수행하였다;(d) 이러한 시스템 대사공학 방법을 통해 Saccharomyces cerevisiae발효 공정의 변환과 함께 리코펜을 효율적으로 생합성한다.

그는 △ 2차 대사산물의 축적과 숙주세포 성장이 균형을 이루어야 한다;(b)리코펜 이형 합성 경로효모 (yeast;(c) 효모 섀시 셀은 더 많은 전구체 물질 및 감소 전력을 제공하기 위해 변형되어야;(d) 효모 발효 기술을 최적화해야합니다.그리고, (a) 라이코펜 이형 합성 경로를 합리적으로 제어할 수 있는 GAL 프로모터 그룹을 선별하여 시간 서열면에서 효모 세포 성장을 라이코펜 생성물 축적으로부터 분리하고, 프로모터 강도 또한 생성물 합성 기간 동안 구성적인 강한 프로모터와 비교할 수 있는;(b)의 세 가지 주요 유전자 원을 종합적으로 스크리닝리코펜 이형 합성 경로, Saccharomyces cerevisiae에서 효율적으로 기능하는 PaCrtE, PagCrtB 및 BtCrtI의 새로운 최적 조합을 얻는 것이다.(c) 또한 아세틸코엔자임 A 및 환원력 NADPH (환원된 코엔자임 II)와 같은 리코펜 합성에 필요한 충분한 전구체를 제공하기 위해 Saccharomyces cerevisiae섀시 세포에 일련의 개량을 수행하였으며, 리코펜 축적에 영향을 미치는 특정 내인성 비필수 유전자를 제거하여 리코펜 생산을 더욱 증가시켰다;(d) 이러한 시스템 대사공학적 방법을 통하여 Saccharomyces cerevisiae에 의한 합성매체 발효의 최적화와 함께 리코펜 수율이 3.28 g/L로 높게 나타나 초기에 산업적 수준에 도달하였다.의 규모를 현재, Chinese-style 발효 6, 000까지 성공적으로 조정 되었습니다. l. 게다가, 신진대사 공학의 전략을 위해 개발로 미세는 또한 성공적으로 확장 되었습니다 biotechnological 합성의 다른 terpene 화합물, 같은 β-farnesene [46], bergapten [47], 그리고 같은 다른 sesquiterpenes β-caryophyllene다.그 중 등샤오민 등 [47]은 이러한 시스템 공학적 전략을 이용하여 Saccharomyces cerevisiae 균주의 대사공학으로 생산된 bergapten의 생산량을 34.6 g/L로 증가시켰다.

리코펜 조작 세균의 발효과정 3.3

현재,의 발효에 대한 연구리코 펜이 당분간미생물에 의해서도 큰 발전을 이루었다.균주마다 사용하는 발효 원료, 공정 및 척도는 다를 것이다 (표 1에 요약). 미생물의 종류에 따라 발효 공정에 사용되는 기질 기질은 다르다.보다 성숙한 리코펜 이형합성을 한 발효 숙주는 일반적으로 Escherichia coli와 Saccharomyces cerevisiae이다.일반적으로 대장균 발효물은 글리세롤을 탄소원으로 사용하며 [20, 45], Saccharomyces cerevisiae는 포도당을 주로 탄소원으로 사용한다 [23~26].

주파인 등 [20]은 글리세롤을 가공한 대장균의 탄소원으로 사용해 a를 얻었다리코펜 수율 1.44 g/L5 L 발효기에서 완전 합성 매체를 사용.이후 발효배율은 150 L로 확대되어 1.32 g/L를 산출하여 균주의 생산을 위한 배지 확장이 가능함을 알 수 있었다.Sun 등 [45]은 대장균을 회분식 공급에서 글리세롤을 탄소원으로 하는 7 L 발효기에서 발효하도록 조작하여 최종적으로 3.52 g/L의 리코펜을 얻었다.천옌 등 (24)은 제조된 Saccharomyces cerevisiae를 이용하여 포도당과 에탄올을 탄소원으로, 효모 추출물과 펩톤의 질소원을 회분식 공급법을 이용하여 5 L 발효기에서 발효시켰다.

그들은1.65 g/L의 리코펜 역가를 얻었다.시빈 등 25)은 제조된 Saccharomyces cerevisiae를 이용하여 포도당과 에탄올을 탄소원으로, 황산암모늄을 질소원으로 사용하는 7 L 발효기에서 2단계 fed-batch 발효를 수행하였다.발효 국물 중의 포도당과 에탄올 잔량을 엄격하게 관리하여 최종 3.28 g/L의 리코펜 역가를 얻었다.Saccharomyces cerevisiae는 대장균에 비해 높은 식품 안전성 및 파지 감염에 대한 저항성 등 많은 장점을 가지고 있으므로, Saccharomyces cerevisiae에 의한 리코펜의 발효에 대한 연구가 더욱 유망하다.현재는 펩톤과 효모추출물을 효모 발효를 위한 질소원으로 자주 사용하는 천연 YPD 매체 [24, 26]와 황산암모늄, 효모추출물, 펩톤을 혼합 질소원으로 하는 반합성 매체 [23], 황산암모늄을 질소원으로 하는 완전 합성 매체 [25] 등이 있다.완전 합성 매체는 저렴하고, 반복 발효와 스케일업이 용이하며, 추후 최적화에 편리한 명확한 구성을 갖는 장점이 있다.앞으로 리코펜 생산을 높고 안정적으로, 반복 가능하고, 확장 가능하게 하기 위한 합성 효모 매체의 발효에 대해 더 많은 연구가 이루어져 후속 산업 응용을 위한 견고한 토대를 마련해야 합니다.

미생물에 의해 합성한 리코펜의 추출 및 정량 3.4

다음과 같은 카로티노이드리코펜은 강한 항산화 특성을 가지고 있습니다, 그리고 추출 과정에서 산화와 이성질화의 위험을 최소화해야 한다 [49].예를 들어, 일부 연구에서는 빛이 보호되는 조건 [20, 45]에서 작동하거나, 추출제에 항산화제 BHT를 첨가하는 방법을 선택했습니다 [24-25, 27].일반적으로 사용되는 추출 용매로는 아세톤, 석유 에테르, 클로로포름, 헥산, 에틸 아세테이트 등이 있다 [49].리코펜은 세포 내 생성물이기 때문에 세포벽 파괴가 필요하며, 숙주 세포벽의 두께에 따라 세포벽 파괴 방법이 달라진다.예를 들어, 대장균의 세포벽은 비교적 얇아 일반적으로 아세톤 소생을 사용하고, 이후 55 °C의 수조에서 세포벽 파괴 (20, 45;지용성 효모 (lipid-soluble 효모)나 사카로마이세스 세르비지애 (Saccharomyces cerevisiae)와 같은 진핵생물은 세포벽이 더 두껍고, 유리구슬과 추출시약은 보통 흔들어서 세포를 부수기 위해 첨가된다 (25, 27;염산을 넣은 수조에서 끓이면 효모 세포벽이 깨지기도 한다 [23~24].

및을 탐지하는 데 사용되는 방법리코펜과 같은 카로티노이드를 정량화한다또한 기존 연구에 따라 다양하다.대부분의 연구 고성능 액체 크로마토그래피 (HPLC)를 사용 하여 리코 펜 같은 카로 티 노이 드을 감지하고 β-carotene [23-26, 45]., 사용하는 동안 몇 ultraviolet-spectrophotometry [20, 27].왜냐하면 UV-spectrophotometer 검출은 동일한 흡수파장을 가진 불순물에 의해 간섭을 받고, HPLC 방식은 먼저 다른 물질을 분리한 후 흡수값을 검출하여 검출하기 때문입니다.상대적으로 HPLC에 의한 리코펜과 같은 카로티노이드의 정확한 정량이 더 정확하며, UV-spectrophotometer 검출은 발효 중 수율 변화 추이를 초기에 평가할 수 있는 보조 수단으로 사용될 수 있다.

대부분의 연구 표준 곡선을 사용 해당 리코 펜과 β-carotene 수율을 계산하는 기준 [23-26, 45]., 하지만 하지 않았다 그 구입 할지 여부리코 펜/β-carotene기준이 조정되었습니다.표준곡선을 그리기 전에 [25] 표준용액의 농도를 보정했다고 명시적으로 밝힌 연구자는 극히 일부에 불과했다.이유는 준비 된 표준의 용액의 농도를 보정 해야하는 것은 그것이 어렵 다는 것을 정확하게 무게 가 소량의 리코 펜 또는 β-carotene 표준, 그리고하 는지 여부를 확인하는 것은 쉽지 않 정확하게 리코 펜 결정체 유기 용매에 용해 완전히 가지고 있다.또한, 보관 방법 및 시간에 따라 구매한 표준의 순도도 변경될 수 있습니다.이러한 객관적 인자들은 리코펜 표준곡선의 그리기에 큰 오차를 발생시켜 계산된 수율이 매우 정확하지 않을 수 있다.상기 인자들의 간섭을 제거하기 위해서 먼저 분광광도계를 이용하여 제조된 리코펜과 다른 카로티노이드 표준용액의 흡광도를 측정한 후, 해당 소멸계수 (25, 50-51)에 따라 용액 중의 카로티노이드의 절대함량을 계산하는 것이 일반적인 방법이다.이 방법은 무게가 부정확하거나 시료의 불완전한 용해로 인한 오류를 제거할 수 있습니다.요약하면 HPLC를 이용하여 시료중의 리코펜을 정확하게 검출하고 보정된 표준용액을 이용하여 표준곡선을 그려보면 정량결과가 더욱 정확할 것이다.

4 결론 및 전망

리코펜은 강한 항산화제로서 여러가지 좋은 생리기능을 갖고있어 시장전망이 넓다.이 논문은 물리 화학적 특성, 생리적 기능 및에 대한 자세한 검토를 제공합니다리코펜의 생산 방법, 그리고 미생물 숙주세포의 다양성 선택, 최신 대사공학 전략, 발효 방법 및 리코펜 추출 및 정확한 정량법 등 생명공학에 의한 리코펜 생산에 대한 현재 연구 진전을 요약하는 데 초점을 맞춘다.

비록 라이코펜의 생명공학적인 합성에 어느 정도 진전이 있었지만, 여전히에 대한 많은 문제점이 있다리코펜 생합성 과정영향 요인이 많은 복잡한 공학 연구 프로젝트이기 때문이다.다음은 향후 관련 연구 방향을 요약하면:

(1) 발효 생산의 규모화 및 안정적인 복제.현재 라이코펜의 생명공학적 합성에 대한 대부분의 연구는 아직 소규모 발효탱크 실험의 실험실 단계에 머물러 있으며, 산업 연구는 톤 또는 수십 톤 단위로 계산된 대규모 발효 생산에 기반하는 경우가 많다.소규모에서 시험생산으로의 발효규모화는 단순히 선형적인 탱크부피의 증가가 아니라 균주의 성장모델의 변화와 함께 불균일한 열전달, 물질전달, 산소전달 등의 많은 과제를 수반한다.작가 &에 따르면#39;s 실제 경험상, 조작된 균주의 발효 증폭 과정 중, 조기 균주 노화, 균주 표현형 저하, 공급 전략의 변화, 불안정한 발효 수율 등의 문제가 발생할 수 있다.연구자들은 발효 공정 증폭의 매개 변수와 조건을 개별적으로 조정할 필요가 있습니다.향후 발효생산 규모의 증폭에 대한 연구는 산업문제를 해결하는 관건이다생명공학을 이용한 리코펜 생산.

(2) 추출 및리코펜의 정제 과정미생물 자원으로부터요.리코펜은 세포 내 생성물로 추출 및 정제 과정은 세포 파괴, 불순물 제거, 리코펜 결정화 등의 많은 단계를 거칩니다.이 과정에서 리코펜은 쉽게 산화되고 이는 구조적인 변화를 가져온다.따라서 추출율을 보장하기 어려우며, 미생물 원료로부터 리코펜의 추출 및 정제과정에 대한 심층적인 연구가 필요하다.

에 대한 연구 (3미생물 lycopene의 품질 검사.미생물인 리코펜도 효소 촉매작용의 산물이긴 하지만, 천연 토마토에서 추출된 것이 아니며 유전자 변형 등의 문제가 수반될 수 있다.따라서 미생물 리코펜이 자연산 토마토 원료와 일치하는지 먼저 구조적으로 확인되어야 하며, 중금속 잔류물 및 미생물 함량과 같은 제품 품질에 대한 품질 검사가 요구된다.제품의 구조와 품질을 보장하는 것도 미생물 리코펜의 시장 응용에 영향을 미치는 중요한 요소입니다.

(4) 생산원가관리:시장에서 경쟁하기 위한 경우자연적으로 추출된 리코펜,생명공학적으로 합성된 리코펜은 상당한 비용 우위를 가지고 있어야 한다.리코펜을 생산하기 위해 생물학적으로 발효시키는 주요 비용에는 발효 원료, 설비의 감가상각비, 추출 및 정제, 인건비, 마케팅 비용 등이 포함됩니다.생산 공정 조건을 설계하고 최적화할 때 비용 요소를 고려해야 하는데, 저렴한 완전 합성 발효 매체를 사용하고, 발효 규모를 확장하여 비용을 분산시키고, 라이코펜을 추출하기 위해 효소세포 파괴와 같은보다 진보된 방법을 사용하여 생산 비용을 절감해야 합니다.

이러한 문제를 해결하는 것은의 산업화를 촉진하는데 매우 이론적, 실천적 의의가 있다생명공학에 의한 리코펜 생산, 그리고 또한 다른 고부가가치 천연물의 생명공학 생산에 대한 연구에 참고자료를 제공할 수 있다.

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